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ptc-miR213的人工microRNA植物表达载体的 构建及遗传转化

谢丽华 蒋晶 刘明英 乔桂荣 邱文敏 杨惠琴 卓仁英

引用本文:
Citation:

ptc-miR213的人工microRNA植物表达载体的 构建及遗传转化

  • 基金项目:

    浙江省科技厅重大专项"重要生态经济树种转基因平台建立及耐盐转基因研究"(2010C12010);浙江省自然科学基金项目(30972340)

  • 中图分类号: S718.46

Construction of Artificial miRNA of ptc-miR213 Expression Vector and Transformation into Arabidopsis thaliana

  • CLC number: S718.46

  • 摘要: ptc-miR213是在构建盐胁迫条件下青杨microRNA文库中发现的,预测其靶基因为MYB4、PP2C、蛋白激酶等,其中MYB家族与植物的耐盐性密切相关。为了探索ptc-miR213在植物盐碱胁迫应答方面的作用,实验构建了植物表达载体pCAM2300-ami213,经根癌农杆菌EHA105介导转化拟南芥,成功获得转基因植株。RT-PCR分析表明amiR213在转基因拟南芥中能够超量表达。本研究为分析ptc-miR213及其靶基因参与植物盐碱胁迫应答奠定了基础。
  • [1]

    Lee R C, Feinbaum R L, Ambros V. The C.elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14 [J]. Cell, 1993, 75(5):843-854
    [2]

    Llave C, Kasschau K D, Rector M A. Endogenous and silencing-associated small RNAs in plants [J]. Plant Cell, 2002, 14(7):1605-1619
    [3]

    Reinhart B J, Weinstein E G, Rhoades M W, et al. MicroRNAs in plants [J]. Genes Dev, 2002, 16(13):1616-1626
    [4]

    Zhao B T, Ge L F, Liang R Q, et al. Members of miR-169 family are induced by high salinity and transiently inhibit the NF-YA transcription factor [J]. Molecular Biology, 2009, 10(8):29
    [5]

    Sunkar R, Zhu J K. Novel and stress-regulated microRNAs and other small RNAs from Arabidopsis [J]. Plant Cell, 2004, 16(8):2001-2019
    [6]

    Gao P, Bai X, Yang L, et al. Over-expression of osa-MIR396c decreases and alkali stress tolerance [J]. Planta,2010, 231(5):991-1001
    [7]

    Jung H J, Kang H. Expression and functional analyses of microRNA417 in Arabidopsis thaliana under stress conditions[J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2007, 45(10-11):805-811
    [8] 鲍 乾, 徐 涛, 张富春. 盐穗木miRNA417的克隆及对种子萌发和幼苗成活率的影响 [J]. 植物研究, 2011, 31(4):408-413

    [9]

    Zhou J, Zhuo R Y, Liu M Y, et.al. Identification and characterization of novel microRNAs from Populus cathayana Rehd.[J]. Plant Mol Biol Rep, 2011, 29(1):242-251
    [10]

    Schwab R, Ossowski S, Warthmann N, et al. Directed gene silencing with artificial microRNAs [J]. Methods Mol Biol, 2010, 592(1):71-88
    [11]

    Murrray M G, Thompson W F. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA [J]. Nucleic Acids Research, 1980,8(9):4321-4325
    [12]

    Liu H X, Zhou X Y, Dong N, et al. Expression of a wheat MYB gene in transgenic tobacco enhances resistance to Ralstonia solanacearum, and to drought and salt stresses [J]. Funct Integr Genomics, 2011, 11(2):431-443
    [13]

    Rahaie M, Xue G P, Naghavi M R, et al. A MYB gene from wheat (Triticum aestivum L.) is up-regulated during salt and drought stresses and differentially regulated between salt-tolerant and sensitive genotypes [J]. Plant Cell Rep, 2010, 29(8):835-844
    [14]

    Dai X Y, Xu Y Y, Ma Q B, et al. Overexpression of an R1R2R3 MYB gene, OsMYB3R-2, increase tolerance to freezing drought, and salt stress in transgenic Arabidopsis[J]. Plant Physiology, 2007, 143(4):1739-1751
    [15]

    Yang A, Dai XY, Zhang W H. A R2R3-type MYB gene, OsMYB2, is involved in salt, cold, and dehydration tolerance in rice[J]. Journal of Experimental Botany, 2012, 63(7):2541-2556
    [16]

    Zhang L C, Zhao G Y, Jia J Z, et al. Molecular characterization of 60 isolated wheat MYB genes and analysis of their expression during abiotic stress [J]. Journal of Experimental Botany, 2012, 63(1):2003-2014
    [17]

    Warthmann N, Chen H, Ossowski S, et al. Highly specific gene silencing by artificial miRNAs in rice[J]. Plos One, 2008, 3(3):1829-1836
    [18] 韩利慧. 利用人工microRNAs对拟南芥DUF647家族基因的特异沉默. 太原:山西大学, 2010

    [19]

    Park W, Zhai J X, Lee J Y. Highly efficient gene silencing using perfect complementary artificial miRNA targeting AP1 or heteromeric artificial miRNA targeting AP1 and CAL genes [J]. Plant Cell Rep, 2009, 28(3):469-480
    [20]

    Shi R, Yang C M, Lu S F, et al. Specific down-regulation of PAL genes by artificial microRNAs in Populus trichocarpa[J]. Planta, 2010, 232(6):1281-1288
    [21]

    Khraiwash B,Ossowski S, Weigel D, et al. Specific Gene Silencing by Artificial MicroRNAs in Physcomitrella patens: An Alternative to Targeted Gene Knockouts [J]. Plant Physiol, 2008, 148(2):684-693
  • [1] 郭飞龙卢孟柱徐刚标叶天文敖小平 . 胡杨基因组片段转化拟南芥表型研究. 林业科学研究, 2018, 31(4): 18-22. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.04.003
    [2] . 拟南芥MYB基因对次生维管系统发育的影响. 林业科学研究, 2010, 23(2): 170-176.
    [3] 李建波张进刘伯斌徐有明卢孟柱陈军 . 拟南芥AtFBDL 1 在植物顶端生长调节中的作用. 林业科学研究, 2015, 28(1): 1-7.
    [4] 王臣虞木奎张翠吴统贵袁健军周成云 . 盐胁迫下3个楸树无性系光合特征研究. 林业科学研究, 2010, 23(4): 537-543.
    [5] 张华新宋丹刘正祥 . 盐胁迫下11个树种生理特性及其耐盐性研究. 林业科学研究, 2008, 21(2): 168-175.
    [6] 成铁龙李焕勇武海雯刘正祥武香杨升张华新杨秀艳 . 盐胁迫下4种耐盐植物渗透调节物质积累的比较. 林业科学研究, 2015, 28(6): 826-832.
    [7] 林雪锋颉洪涛虞木奎陈顺伟 . 盐胁迫下3种海滨植物形态和生理响应特征及耐盐性差异. 林业科学研究, 2018, 31(3): 95-103. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.03.013
    [8] 张川红沈应柏尹伟伦 . 盐胁迫对国槐和核桃幼苗光合作用的影响. 林业科学研究, 2002, 15(1): 34-40.
    [9] . 盐胁迫对桑树幼苗光合生理及叶绿素荧光特性的影响. 林业科学研究, 2009, 22(2): -.
    [10] 倪建伟杨秀艳张华新武海雯许秀玉刘涛 . 唐古特白刺悬浮细胞对盐胁迫的生长与生理响应. 林业科学研究, 2015, 28(2): 194-201.
    [11] 刘军徐金良邹军陈文荣姜景民 . 盐胁迫对红楠幼苗生长及Na+、K+吸收和分布的影响. 林业科学研究, 2013, 26(6): 790-794.
    [12] 田林尹丹丹成铁龙夏新莉尹伟伦 . 盐胁迫下比拉底白刺差异表达基因的转录组分析. 林业科学研究, 2020, 33(1): 1-10. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2020.01.001
    [13] 梁锐涛韩维栋杨少瑕陈蓓蓓 . 无瓣海桑根响应盐胁迫的转录组分析. 林业科学研究, 2023, 36(1): 68-78. doi: 10.12403/j.1001-1498.20230142
    [14] 魏琦武海雯刘正祥李焕勇杨秀艳张华新 . 盐胁迫下沙枣生物固氮能力及氮素分配研究. 林业科学研究, 2017, 30(6): 985-992. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2017.06.014
    [15] 高明远甘红豪李清河李斌褚建民 . 外源水杨酸对盐胁迫下白榆生理特性的影响. 林业科学研究, 2018, 31(6): 138-143. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.06.019
    [16] 王宁周晓星刘俊祥巨关升韩蕾孙振元 . 盐胁迫对柳树无性系SH31离子含量及光合作用的影响. 林业科学研究, 2015, 28(4): 565-569.
    [17] 刘聪张洋夏德安陈雪冰魏志刚 . 毛果杨PLD基因家族全基因组水平鉴定及其盐胁迫下的表达分析. 林业科学研究, 2021, 34(3): 23-36. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2021.03.003
    [18] . 盐胁迫对6个树种的生长及生理指标的影响. 林业科学研究, 2009, 22(3): -.
    [19] 杨升张华新刘涛 . 盐胁迫对16种幼苗渗透调节物质的影响. 林业科学研究, 2012, 25(3): 269-277.
    [20] 邱凤英廖宝文肖复明 . 半红树植物杨叶肖槿幼苗耐盐性研究. 林业科学研究, 2011, 24(1): 51-55.
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出版历程
  • 收稿日期:  2012-05-28

ptc-miR213的人工microRNA植物表达载体的 构建及遗传转化

  • 1. 中国林业科学研究院亚热带林业研究所, 浙江 富阳 311400
基金项目:  浙江省科技厅重大专项"重要生态经济树种转基因平台建立及耐盐转基因研究"(2010C12010);浙江省自然科学基金项目(30972340)

摘要: ptc-miR213是在构建盐胁迫条件下青杨microRNA文库中发现的,预测其靶基因为MYB4、PP2C、蛋白激酶等,其中MYB家族与植物的耐盐性密切相关。为了探索ptc-miR213在植物盐碱胁迫应答方面的作用,实验构建了植物表达载体pCAM2300-ami213,经根癌农杆菌EHA105介导转化拟南芥,成功获得转基因植株。RT-PCR分析表明amiR213在转基因拟南芥中能够超量表达。本研究为分析ptc-miR213及其靶基因参与植物盐碱胁迫应答奠定了基础。

English Abstract

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