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O3胁迫对三种楠木幼苗光合作用的影响及伤害症状

于浩 尚鹤 陈展 曹吉鑫

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O3胁迫对三种楠木幼苗光合作用的影响及伤害症状

  • 基金项目:

    国家林业公益性行业专项“森林对O3和大气N沉降胁迫的响应”(201304313)、国家自然科学基金“亚热带典型针叶和阔叶树种细根动态和周转对大气臭氧胁迫的响应研究”(31370606)。

  • 中图分类号: S792.24

Effects of Elevated O3 Level on Photosynthesis and Injury of Phoebe and Machilus Seedlings in Subtropical China

  • CLC number: S792.24

  • 摘要: [目的] 随着全球O3浓度升高,O3胁迫对植物影响的研究已成为研究的热点之一。我国的相关研究较少,主要以农作物为主,且大多局限在北方地区。本研究探讨O3胁迫下,亚热带三种楠木幼苗光合作用的变化规律及其可见伤害症状,以期为后续研究提供理论依据。[方法] 以一年生亚热带乡土树种桢楠、闽楠和刨花楠幼苗为材料,采用开顶式气室(OTCs),研究低浓度O3、环境大气、100 nL·L-1O3、150 nL·L-1O3处理对光合作用的影响及伤害症状。[结果] 研究表明:(1)O3胁迫下,三种楠木幼苗的光合作用受到一定的抑制,气孔导度和净光合速率的相关性降低,对光合有效辐射的利用范围整体减小,出现了明显的光抑制现象。O3浓度越高,对桢楠和刨花楠光合作用的抑制效果越明显,而100 nL·L-1O3处理对闽楠光合作用的抑制效果较150 nL·L-1O3处理明显。环境大气中的O3浓度均值较低,但由于其较高的O3浓度峰值,仍对三种楠木幼苗的光合作用产生了一定的抑制。与环境大气相比,低浓度O3处理通过消除较高的O3浓度峰值从而缓解了O3对光合作用的不利影响。(2)O3胁迫下,桢楠叶片出现褪绿、黄斑和坏死斑的症状,闽楠叶片出现褪绿、黄斑和水渍的症状,刨花楠叶片出现红褐色斑、水渍、坏死斑、卷曲皱缩、失水萎蔫的症状。三种楠木幼苗叶片的伤害症状随O3浓度的增加而更明显。[结论] 三种楠木幼苗叶片的光合作用均受到O3的抑制,并出现了伤害症状,可作为O3污染的指示树种。光合作用对O3敏感性的关系为:刨花楠>闽楠>桢楠,其中刨花楠对O3更敏感,伤害症状也较多样,因此指示O3污染的效果更好。
  • [1]

    Vingarzan R. A review of surface ozone background levels and trends[J]. Atmospheric Environment, 2004, 38(21): 3431-3442.
    [2]

    Bytnerowicz A, Omasa K, Paoletti E. Integrated effects of air pollution and climate change on forests: a northern hemisphere perspective[J]. Environmental Pollution, 2007, 147(3): 438-445.
    [3]

    Serengil Y, Augustaitis A, Bytnerowicz A, et al. Adaptation of forest ecosystems to air pollution and climate change: a global assessment on research priorities[J]. iForest-Biogeosciences and Forestry, 2011, 4(2): 44-48.
    [4]

    Forest decline and ozone: a comparison of controlled chamber and field experiments[M]. Springer Science & Business Media, 1997.
    [5]

    Ashmore M R. Assessing the future global impacts of ozone on vegetation[J]. Plant, Cell & Environment, 2005, 28(8): 949-964.
    [6]

    Paoletti E, Ferrara A M, Calatayud V, et al. Deciduous shrubs for ozone bioindication: Hibiscus syriacus as an example[J]. Environmental Pollution, 2009, 157(3): 865-870.
    [7]

    Vingarzan R. A review of surface ozone background levels and trends[J]. Atmospheric Environment, 2004, 38(21): 3431-3442.
    [8]

    Derwent R G, Simmonds P G, Manning A J, et al. Trends over a 20-year period from 1987 to 2007 in surface ozone at the atmospheric research station, Mace Head, Ireland[J]. Atmospheric Environment, 2007, 41(39): 9091-9098.
    [9]

    The Royal Society. Ground-level Ozone in the 21st Century: Future Trends, Impacts and Policy Implications[J]. Science Policy, Report 15/08, 2008.
    [10]

    IPCC. CLIMATECHANGE 2001-The Scientific Basis[M].Cambridge, UK and New York, USA: Cambridge University Press, 2002.
    [11] 冯兆忠, 王效科, 郑启伟, 等. 油菜叶片气体交换对 O 3 浓度和熏蒸方式的响应[J]. 生态学报, 2013, 26(3): 823-829.

    [12]

    Krupa S, McGrath M T, Andersen C P, et al. Ambient ozone and plant health[J]. Plant Disease, 2001, 85(1): 4-12.
    [13]

    Grantz D A, Gunn S, VU H B. O3 impacts on plant development: a meta-analysis of root/shoot allocation and growth[J]. Plant, Cell & Environment, 2006, 29(7): 1193-1209.
    [14]

    Faoro F, Iriti M. Cell death behind invisible symptoms: early diagnosis of ozone injury[J]. Biologia plantarum, 2005, 49(4): 585-592.
    [15]

    Fagnano M, Maggio A, Fumagalli I. Crops' responses to ozone in Mediterranean environments[J]. Environmental Pollution, 2009, 157(5): 1438-1444.
    [16]

    Bermejo V, Gimeno B S, Sanz J, et al. Assessment of the ozone sensitivity of 22 native plant species from Mediterranean annual pastures based on visible injury[J]. Atmospheric Environment, 2003, 37(33): 4667-4677.
    [17]

    Fuhrer J. Ozone risk for crops and pastures in present and future climates[J]. Naturwissenschaften, 2009, 96(2): 173-194.
    [18]

    Ryang S Z, Woo S Y, Kwon S Y, et al. Changes of net photosynthesis, antioxidant enzyme activities, and antioxidant contents of Liriodendron tulipifera under elevated ozone[J]. Photosynthetica, 2009, 47(1): 19-25.
    [19]

    Andersen C P. Source-sink balance and carbon allocation below ground in plants exposed to ozone[J]. New Phytologist, 2003, 157(2): 213-228.
    [20]

    Watanabe M, Umemoto-Yamaguchi M, Koike T, et al. Growth and photosynthetic response of Fagus crenata seedlings to ozone and/or elevated carbon dioxide[J]. Landscape and Ecological Engineering, 2010, 6(2): 181-190.
    [21]

    HUANG S, ZHAO T, JIN D, et al. Photosynthetic physio-response of urban Quercus mongolica leaves to surface elevated ozone concentration[J]. Liaoning Forestry Science and Technology, 2009, 5: 004.
    [22]

    Zheng Y F, Hu C D, Wu R J, et al. Experiment with effects of increased surface ozone concentration upon winter wheat photosynthesis[J]. Acta Ecologica Sinica, 2010, 30(4): 847-855.
    [23]

    Guidi L, Bongi G, Ciompi S, et al. In Vicia faba leaves photoinhibition from ozone fumigation in light precedes a decrease in quantum yield of functional PSII centres[J]. Journal of plant physiology, 1999, 154(2): 167-172.
    [24]

    Zhang W W, Niu J F, Wang X K, et al. Effects of ozone exposure on growth and photosynthesis of the seedlings of Liriodendron chinense(Hemsl.) Sarg, a native tree species of subtropical China[J]. Photosynthetica, 2011, 49(1): 29-36.
    [25]

    Pleijel, H., H. Danielsson, J. Gelang, et al. Growth stage dependence of the grain yield response to ozone in spring wheat (Triticum aestivum L.)[J]. Agriculture, ecosystems & environment, 1998. 70(1): 61-68.
    [26]

    Clark, A.J., W. Landolt, J. Bucher, et al. Beech (Fagus sylvatica) response to ozone exposure assessed with a chlorophyll a fluorescence performance index[J]. Environmental Pollution, 2000. 109(3): 501-507.
    [27]

    Contran, N. and E. Paoletti. Visible foliar injury and physiological responses to ozone in Italian provenances of Fraxinus excelsior and F. ornus[J]. The Scientific World Journal, 2007. 7: 90-97.
    [28]

    Desotgiu, R., F. Bussotti, F. Faoro, et al. Early events in Populus hybrid and Fagus sylvatica leaves exposed to ozone[J]. The Scientific World Journal, 2010. 10: 512-527.
    [29]

    Calatayud, A. and E. Barreno. Response to ozone in two lettuce varieties on chlorophyll a fluorescence, photosynthetic pigments and lipid peroxidation[J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2004. 42(6): 549-555.
    [30]

    Calatayud, V., J. Cerveró, E. Calvo, et al. Responses of evergreen and deciduous Quercus species to enhanced ozone levels[J]. Environmental Pollution, 2011. 159(1): 55-63.
    [31]

    Pleijel, H. Reduced ozone by air filtration consistently improved grain yield in wheat[J]. Environmental Pollution, 2011. 159(4): 897-902.
    [32]

    Innes, J., J. Skelly, and M. Schaub. Ozone and Braodleaved Species. A Guide to the Identification of Ozone-induced Foliar Injury[J]. Ozon, Laubholz-und Krautpflanzen. Ein Führer zum Bestimmen von Ozonsymptomen. Eidgenössische Forschungsanstalt WSL, Birmensdorf Paul Haupt Verlag, Bern, Stuttgart, Wien, 2001.
    [33]

    Wittig V E, Ainsworth E A, Naidu S L, et al. Quantifying the impact of current and future tropospheric ozone on tree biomass, growth, physiology and biochemistry: a quantitative meta-analysis[J]. Global Change Biology, 2009, 15(2): 396-424.
    [34] 张巍巍, 牛俊峰, 王效科, 等. 大气臭氧浓度增加对湿地松幼苗的影响[J]. 环境科学, 2011, 32(6):1710-1716.

    [35] 彭斌, 赖上坤, 李潘林, 等. 开放式空气中臭氧浓度升高对超级稻Ⅱ优084生长和产量的影响[J].农业环境科学报, 2014, 02:217-223.

    [36] 付伟, 高江艳, 徐胜, 等. 高浓度臭氧对城市白桦和银中杨光合作用的影响[J]. 生态学杂志, 2014, 12: 3184-3190.

    [37]

    Ismail, I., J. Basahi, and I. Hassan. Gas exchange and chlorophyll fluorescence of pea (Pisum sativum L.) plants in response to ambient ozone at a rural site in Egypt[J]. Science of the total environment, 2014. 497: 585-593.
    [38] 李秋静, 卢广超, 薛立, 等. 臭氧与干旱交叉胁迫对3树种幼苗光合生理的影响[J]. 广东林业科技, 2014, 02: 45-52.

    [39]

    Paoletti E, Grulke N E. Does living in elevated CO 2 ameliorate tree response to ozone? A review on stomatal responses[J]. Environmental Pollution, 2005, 137(3): 483-493.
    [40]

    Pääkkönen E, Vahala J, Pohjola M, et al. Physiological, stomatal and ultrastructural ozone responses in birch (Betula pendula Roth.) are modified by water stress[J]. Plant, Cell & Environment, 1998, 21(7): 671-684.
    [41]

    Vingarzan, R. A review of surface ozone background levels and trends[J]. Atmospheric Environment, 2004. 38(21): 3431-3442.
    [42]

    Zhang W, Feng Z, Wang X, et al. Elevated ozone negatively affects photosynthesis of current-year leaves but not previous-year leaves in evergreen Cyclobalanopsis glauca seedlings[J]. Environmental Pollution, 2014, 184: 676-681.
    [43]

    Wittig V E, Ainsworth E A, Long S P. To what extent do current and projected increases in surface ozone affect photosynthesis and stomatal conductance of trees? Ameta-analytic review of the last 3 decades of experiments[J]. Plant, cell & environment, 2007, 30(9): 1150-1162.
    [44] 张薇薇. 近地层O3浓度升高对我国亚热带典型树种的影响. 北京: 中国科学院生态环境研究中心, 2011.

  • [1] 于浩陈展曹吉鑫尚鹤 . O3浓度升高对桢楠和闽楠幼苗光合作用、抗氧化能力及生物量的影响. 林业科学研究, 2018, 31(5): 33-41. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.05.005
    [2] . 厚壁毛竹光合作用对环境因子响应的季节变化. 林业科学研究, 2009, 22(6): 872-877.
    [3] . 光合作用光响应曲线模型选择及低光强属性界定. 林业科学研究, 2009, 22(6): 765-771.
    [4] 许丽娟刘海轩吴鞠李金航李苹孙广鹏李军徐程扬 . 生长抑制剂对大叶黄杨形态及光合作用的影响. 林业科学研究, 2018, 31(6): 89-97. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.06.013
    [5] 王树凤施翔陈益泰孙海菁王涛陈雨春 . 遮荫对弗吉尼亚栎苗木生长及光合-荧光参数的影响. 林业科学研究, 2019, 32(5): 99-106. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2019.05.013
    [6] 徐倩李华雄鲜小林林玲陈睿宋伟付伟潘远智 . β-氨基丁酸对NaHCO3胁迫下杜鹃光合特性和抗氧化系统的影响. 林业科学研究, 2018, 31(2): 133-140. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.02.019
    [7] 何季吴波贾子毅曹燕丽姚斌 . 白刺光合生理特性对人工模拟增雨的响应. 林业科学研究, 2013, 26(1): 58-64.
    [8] 刘梦盈石雷马云强张忠和刘雪莲姚俊杜婷 . 基于高光谱特征和光合参数监测松小蠹不同危害时期的相关分析. 林业科学研究, 2020, 33(2): 118-127. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2020.02.015
    [9] 高健吴泽民彭镇华 . 滩地杨树光合作用生理生态的研究. 林业科学研究, 2000, 13(2): 147-152.
    [10] 胡新生王世绩 . 温度和湿度对杨树无性系光合机构CO2瞬间响应分析. 林业科学研究, 1996, 9(4): 368-375.
    [11] . 云南松与华山松人工混交林针叶光合速率对光及CO2浓度的响应特征. 林业科学研究, 2009, 22(1): -.
    [12] 骆琴娅漆龙霖方晰杨志林 . 山茶属植物五个物种光合作用的研究. 林业科学研究, 1993, 6(3): 311-316.
    [13] 陈应龙弓明钦陈羽王凤珍 . 外生菌根菌接种对红椎生长及光合作用的影响. 林业科学研究, 2001, 14(5): 515-522.
    [14] 张川红沈应柏尹伟伦 . 盐胁迫对国槐和核桃幼苗光合作用的影响. 林业科学研究, 2002, 15(1): 34-40.
    [15] 张往祥曹福亮 . 高温期间水分对银杏光合作用和光化学效率的影响. 林业科学研究, 2002, 15(6): 672-679.
    [16] 朱春全王世绩王富国张启钮利民袁国文 . 六个杨树无性系苗木生长、生物量和光合作用的研究*. 林业科学研究, 1995, 8(4): 388-394.
    [17] 姜成英朱振家史艳虎吴文俊赵梦炯陈炜青陈年来 . 枝梢环剥对油橄榄莱星品种果实产量及叶片光合作用的影响. 林业科学研究, 2016, 29(2): 289-293.
    [18] 刘建伟刘雅荣王世绩 . 水分胁迫下不同杨树无性系苗期的光合作用. 林业科学研究, 1993, 6(1): 65-69.
    [19] 施建敏郭起荣杨光耀 . 毛竹光合动态研究. 林业科学研究, 2005, 18(5): 551-555.
    [20] 孟平张劲松高峻 . 山茱萸幼树光合及水分生理生态特性. 林业科学研究, 2005, 18(1): 47-51.
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出版历程
  • 收稿日期:  2015-09-29

O3胁迫对三种楠木幼苗光合作用的影响及伤害症状

  • 1. 中国林业科学研究院森林生态环境与保护研究所, 国家林业局森林生态环境重点实验室, 北京 100091
基金项目:  国家林业公益性行业专项“森林对O3和大气N沉降胁迫的响应”(201304313)、国家自然科学基金“亚热带典型针叶和阔叶树种细根动态和周转对大气臭氧胁迫的响应研究”(31370606)。

摘要: [目的] 随着全球O3浓度升高,O3胁迫对植物影响的研究已成为研究的热点之一。我国的相关研究较少,主要以农作物为主,且大多局限在北方地区。本研究探讨O3胁迫下,亚热带三种楠木幼苗光合作用的变化规律及其可见伤害症状,以期为后续研究提供理论依据。[方法] 以一年生亚热带乡土树种桢楠、闽楠和刨花楠幼苗为材料,采用开顶式气室(OTCs),研究低浓度O3、环境大气、100 nL·L-1O3、150 nL·L-1O3处理对光合作用的影响及伤害症状。[结果] 研究表明:(1)O3胁迫下,三种楠木幼苗的光合作用受到一定的抑制,气孔导度和净光合速率的相关性降低,对光合有效辐射的利用范围整体减小,出现了明显的光抑制现象。O3浓度越高,对桢楠和刨花楠光合作用的抑制效果越明显,而100 nL·L-1O3处理对闽楠光合作用的抑制效果较150 nL·L-1O3处理明显。环境大气中的O3浓度均值较低,但由于其较高的O3浓度峰值,仍对三种楠木幼苗的光合作用产生了一定的抑制。与环境大气相比,低浓度O3处理通过消除较高的O3浓度峰值从而缓解了O3对光合作用的不利影响。(2)O3胁迫下,桢楠叶片出现褪绿、黄斑和坏死斑的症状,闽楠叶片出现褪绿、黄斑和水渍的症状,刨花楠叶片出现红褐色斑、水渍、坏死斑、卷曲皱缩、失水萎蔫的症状。三种楠木幼苗叶片的伤害症状随O3浓度的增加而更明显。[结论] 三种楠木幼苗叶片的光合作用均受到O3的抑制,并出现了伤害症状,可作为O3污染的指示树种。光合作用对O3敏感性的关系为:刨花楠>闽楠>桢楠,其中刨花楠对O3更敏感,伤害症状也较多样,因此指示O3污染的效果更好。

English Abstract

参考文献 (44)

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