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侧柏（Platycladus orientalis (L.) Franco），属柏科（Cupressaceae）侧柏属（Platycladus）常绿乔木，耐干旱贫瘠，适应范围广，是我国荒山造林的先锋树种，也是重要的园林绿化树种，除新疆、青海外，全国均有分布。侧柏种植在防风固沙、调节生态气候等方面具有重要意义。侧柏是高龄树种，一些历史风景名胜地现存的古柏更是中华民族五千年历史文明的见证及珍贵历史文化遗存，具有极其重要的自然景观价值和历史价值。
侧柏叶枯病是一种重要的侧柏叶部病害，在我国江苏、安徽、陕西等地大面积发生，在江苏盱眙县侧柏被害率达100%，病情指数高达50.0以上，危害严重时，侧柏干枯死亡，已成为我国侧柏最重要的病害之一[1]。目前的研究表明，Alternaria pruni McAlpine[2]、A. alternata (Fr.) Keissler、Pestalotiopsis gracilis (Kleb.) Steyaert、Chloroscypha platycladus Y. S. Dai[3]、Monochaetia sp.[4]和Keithia thujina Durand[5]均可以引起侧柏叶枯病。由于生长地理位置及生境差异，病原有所不同。2020年作者发现在济南市林场、千佛山风景区等侧柏林中，侧柏鳞叶出现枯黄脱落现象，病株率达90%以上，危害严重的侧柏整株枯死。济南市侧柏面积8.25万hm2，侧柏枝枯病主要发生于枝叶部，造成侧柏树势衰弱，可能诱发双条杉天牛、小蠹虫等次期性害虫的危害，造成侧柏林成片干枯，影响绿化效果，造成严重的生态和经济损失。为有效控制危害，明确病原种类是十分必要的。因此，本研究通过形态特征、多基因系统发育分析以及致病性测定，明确在济南市引起侧柏枝枯的致病因子，以期为该病害的发生、流行规律及其防治提供参考依据。
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感病的侧柏枝条及鳞叶，从山东省济南市佛慧山（36°37′37″ N, 117°2′44″ E）、仰山（36°36′26″ N, 117°1′43″ E）、蚂蚱鞍子山（36°37′21″ N, 117°44′46″ E）、廻龙山（36°37′25″ N, 117°4′26″ E）侧柏林采集。
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采用组织分离法。先用70%乙醇将样品表面消毒，然后在侧柏细枝、鳞叶病健交界处利用无菌解剖刀取5 mm2的组织块，依次用3%次氯酸钠浸泡1 min，无菌水冲洗3次。将处理好的组织块置于PDA平板上，每个平皿放置5块，25 ℃培养3 d。将生长的菌落纯化转接至新的PDA平板上，25 ℃下培养，采取孢子稀释分离法获取单菌落。分离获得的菌株均保存于山东省林业科学研究院森林保护研究所。
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分离菌株致病性测定采用室内离体接种法及室外活体接种法。室内离体接种法，选择健康的侧柏细枝条，自来水冲洗干净，晾干后，用70%酒精表面消毒，备用。将分离获得的菌株在PDA培养基上培养5 d，在菌落边缘用打孔器制作菌饼（
$\phi$ = 5 mm），转移至低营养琼脂培养基（SNA）平板上，菌饼菌丝贴在平板上，在菌饼周围放置2根无菌松针，紫外灯照射条件下培养10 d诱导产孢。将孢子配置成106孢子·mL−1孢子悬浮液，备用。先用无菌的挑针（$\phi $ = 0.5 mm）轻微刺伤鳞叶，在伤口处滴200 μL孢子悬浮液，以无菌水为对照。将处理后的枝条置于含有少量无菌水的无菌烧杯中，用保鲜膜封闭，置于25 ℃恒温培养箱中培养7 d，观察。每组试验各做5次平行处理，重复2次。室外活体接种，选用健康无病生长一致的播种2年生盆栽侧柏苗进行活体接种。鳞叶用挑针刺伤，干基部用无菌手术刀做“T”伤口，在伤口处滴200 μL 孢子悬浮液，并放上无菌水浸湿的脱脂棉，用剪好的封口膜包扎，以接种无菌水为对照。为了防止水分蒸发过快，每一株侧柏用黑色塑料袋包裹，2 d后除去黑色塑料袋，每天进行观察；每组试验各做5次平行处理，重复2次。
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将分离获得的单孢菌株在PDA培养基平板活化培养5 d，在菌落边缘利用打孔器制作菌饼（
$\phi $ = 5 mm），将菌饼置于PDA、MEA平板中央，每个平板置1块菌饼，25 ℃、12 h照射/12 h黑暗交替培养，观察记录菌落特征。 -
DNA的提取采用改进的CTAB法。扩增的目的基因分别为核糖体转录间隔区序列（ITS）、翻译延伸因子−1α（TEF1-α）、β-微管蛋白（TUB2）。引物序列及扩增反应条件参数见表1。扩增反应体系为25 μL，其中2 μL DNA 模板、8.5 μL ddH2O、12.5 μL Taq 酶 mix、各1 μL上下游引物。PCR扩增产物由上海派森诺生物科技有限公司进行双向测序。
表 1 PCR扩增所用引物及反应程序
Table 1. Primers used in this study, with sequence and PCR conditions
基因
Gene引物
Primer序列
Sequence预变性
Initial denaturation变性
Denaturation退火
Annealing延伸
Extension最后延伸
Final extension°C min °C s °C s °C min °C min ITS ITS1 TCCGTAGGTGAACCTGCGG 95 5 94 30 58 30 72 1.5 72 7 ITS4 TCCTCCGCTTATTGATATGC TEF1-α EF1-728F CATCGAGAAGTTCGAGAAGG 94 5 94 30 52 30 72 1.5 72 7 EF-986R TACTTGAAGGAACCCTTACC TUB2 BT-2a GGTAACCAAATCGGTGCTGCTTTC 94 5 94 45 55 30 72 45 72 10 BT-2b ACCCTCAGTGTAGTGACCCTTGGC 将获得的ITS、TEF1-α和TUB2序列提交NCBI 数据库，并利用Blast进行比对。选取38株Neofusicoccum sp.菌株作为参考菌株，以Botryosphaeria dothidea (CBS 115476)、Dothiorella iberica (CBS 115041)和D. sarmentorum (IMI63581b) 作为外围菌株（表2）。利用 Fasta alignment joiner 软件（
https://users-birc.au.dk/～palle/php/fabox/alignment_joiner.php# ）通过首尾相连的方法，将 ITS、TEF1-α和TUB2基因串联。利用MEGA 7.0 软件，采用最大似然法（Maximum Likelihood）构建多基因系统发育树，循环1 000次，并以自展支持率（Bootstrap）校对检测。表 2 用于系统发育分析的参考菌株序列
Table 2. Strains and sequences of the genus Neofusicoccum used in this study
种类
Species菌株编号
Cultrue accession寄主
Host国家
Country基因编号
GenBank accessionsITS TEF-1α TUB2 Neofusicoccum algeriense CBS137504 Vitis vinifera Algeria KJ657702 KJ657715 KX505915 N. algeriense CAA322 Eucalyptus globulus - KX505906 KX505894 KX505916 N. andinum CBS117453 Eucalyptus sp. Venezyela AY693976 AY693977 KX464923 N. arbuti CBS116131 Arbutus menziesii USA AY819720 KF531792 KF531793 N. australe CMW6837 Acacia sp. Australia AY339262 AY339270 AY339254 N. batangarum CBS124924 Terminalia catappa Africa FJ900607 FJ900653 FJ900634 N. brasiliense CMM1338 Mangifera indica Brazil JX513630 JX513610 KC794031 N. buxi CBS113714 B.sempervirens France KX464164 KX464677 KX464954 N. cordaticola CBS123634 Syzygium cordatum South Africa EU821898 EU821868 EU821838 N. corticosae CBS120081 - - DQ923533 KX464682 KX464958 N. cryptoaustrale CMW23785 Eucalyptus sp. South Africa FJ752742 FJ752713 FJ752756 N. eucalvpticola CBS115766 Eucalyptus rossii Australia AY615143 AY615135 AY615127 N. eucalypticola CBS115679 Eucalyptus rossii Australia AY615141 AY615133 AY615125 N. hellenicum CERC1947 Pistachia vera Greece KP217053 KP217061 KP217069 N. illicii CGMCC3.18311 Illicium verum China KY350150 KY817756 KY350156 N. kwambonambiense CBS123639 Syzygium cordatum South Africa EU821900 EU821870 EU821840 N. lumnitzerae CMW41469 - - KP860881 KP860724 KP860801 N. luteum CBS110299 Vitis vinifera Portugal AY259091 AY573217 DQ458848 N. macroclavatum WAC12444 Eucalyptus globulus Australia DQ093196 DQ093217 DQ093206 N. mangiferae CBS118531 Mangifera indica Australia AY615185 DQ093221 AY615172 N. mangroviorum CMW41365 - - KP860859 KP860702 KP860779 N. mediterraneum CBS121718 Eucalyptus sp. Greece GU251176 GU251308 GU251836 N. occulatum CBS128008 Eucalyptus grandis hybrid Australia EU301030 EU339509 EU339472 MUCC286 Eucalyptus pellita Australia EU736947 EU339511 EU339474 CBL-02* Platycladus orientalis China OM283294 OM315202 OM403995 CBL-03* Platycladus orientalis China OM283295 OM315203 OM691696 CBCB-02* Platycladus orientalis China OM283296 OM315204 OM403996 N. parvum CMW9081 Actinidia deliciosa New Zealand AY236943 AY236888 AY236917 N. parvum CBS110301 Vitis vinifera Portugal AY259098 AY573221 EU673095 N. pennatisporum MUCC510 Vitis vinifera - EF591925 EF591976 EF591959 N. pistaciae CBS595.76 Pistachia vera Greece KX464163 KX464676 KX464953 N. pistaciarum CBS113083 Pistachia vera USA KX464186 KX464712 KX464998 N. protearum CBS114176 - South Africa AF452539 KX464720 KX465006 N. ribis CBS115475 Ribes sp. USA AY236935 AY236877 AY236906 N. sinense CGMCC3.18315 - China KY350148 KY817755 KY350154 N. stellenboschiana CBS282.70 - - KX464225 KX464758 KX465051 N. terminaliae CMW26679 - - GQ471802 GQ471780 KX465052 N. umdonicola CBS123645 Syzygium cordatum South Africa EU821904 EU821874 EU821844 N. ursorum CMW24480 Eucalyptus sp. South Africa FJ752746 FJ752709 KX465056 N.viticlavatum CBS112878 Vitis vinifera South Africa AY343381 AY343342 KX465058 N. vitifusiforme CBS110887 Vitis vinifera South Africa AY343383 AY343343 KX465061 Dothiorella iberica CBS115041 Quercus ilex Spain AY573202 AY573222 EU673096 D. sarmentorum IMI63581b Ulmus sp. United Kingdom AY573212 AY573235 EU673102 Botryosphaeria dothidea CBS115476 Prunus sp. Switzerland AY236949 AY236898 AY236927 *表示的是研究菌株。
*=Strains collected in the present study. -
危害叶片，多由叶片前端或中部枯黄、变褐枯死。危害细枝，呈段斑状变褐（图1a, b）。在枯死的鳞叶和细枝上产生黑色的颗粒物（图1d）。树冠内部和下部发生严重。严重时，叶片大量脱落，枝条枯死，在主干或枝干上萌发出一丛丛的小枝叶，形成所谓“树胡子”。连续数年受害，最终全株枯死（图1c）。
图 1 侧柏枝枯病症状（a）~（c）林间症状；（d）在侧柏鳞叶和枝条上产生的子实体；（e）分生孢子器纵切面
Figure 1. Shoot blight disease symptom on Platycladus orientalis; (a)~(c) symptom in the field; (d) fruiting bodies produced on leaves and shoots (e) longitudinal section of pycnidium Bars=20 μm
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从4个地点共采集样品20份，分离获得菌株87株。根据菌落形态特征分为3种类型，其中链格孢属真菌27株（31.0%），细菌菌株4株（4.6%），其余为1种真菌共56株（64.4%），菌落形态特征一致，分生孢子形态与侧柏鳞叶和枝条上子实体分生孢子形态相似（图1e）。
选择代表性菌株CBL-02、CBL-03和CBCB-02菌株室内离体接种7 d后，在鳞叶、枝条接种部位，均可以引起相同症状，致使侧柏鳞叶变色，形成黑褐色病斑（图2a），枝条接种点黑褐色（图2d）。显微观察，在鳞叶、枝条接种部位均有黑色子实体产生（图2b~d）。而空白对照未出现相应症状（图2f）。室外活体接种30 d后，在接种部位侧柏鳞叶变黄、枯死（图2e）。接种60 d，枝条、鳞叶干枯脱落，侧柏整株死亡（图2g），与田间观察症状一致。从接种发病部位重新分离，获得的菌株与接种菌株形态特征一致。表明，分离菌株为侧柏枝枯病的病原菌。
图 2 致病性试验（a）～（c）侧柏叶片接种CBCB-02菌株7 d后症状及子实体; （d）侧柏枝条接种CBCB-02菌株7d后症状及子实体；（e）2年生侧柏苗接种CBCB-02菌株30 d症状；（f）对照；（g）2年生侧柏苗接种CBCB-02菌株60 d症状；左边为对照，右边为处理。
Figure 2. Pathogenicity test; (a)～(c) symptoms on Platycladus orientalis leaves inoculated with isolate CBCB-02 for 7 d; (d) symptoms on inoculation sites of P. orientalis shoot; (e) symptoms on seedlings (2-years) inoculated with isolate CBCB-02 for 30 d; (f) inoculated with sterile distilled water; (g) symptoms on seedlings (2-years) inoculated with isolate CBCB-02 for 60 d, L: control, R: treated
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在PDA培养基上，初期白色，稀疏，向四周扩散，培养5 d后，菌落达到平板边缘（
$\phi $ = 70 mm），菌丝开始呈现白色絮状，菌丝致密，中期颜色逐渐变成灰色（图3a），后期呈现深灰绿色，背面黑褐色，边缘完整（图3b）。在MEA培养基上，初期白色，絮状向四周扩散生长，后渐变为灰白色。培养3 d，菌落达到平板边缘（$ \phi $ = 70 mm），菌落边缘完整（图3d），后期灰色、灰褐色，背面深灰绿色（图3e）。没有观察到有性特征。分生孢子器于7 d内产生于松针上，单生或聚生，外面包被白色菌丝，暗褐色至黑色（图3c）。分生孢子单孢透明、梭形、椭圆形、卵球形，顶端钝圆，基部平截，有时两端变窄。无隔膜，表面光滑，大小为20.6 ± 2.4 μm × 7.6 ± 1.2 μm（L/W = 2.7，n = 50）（图3f）。
图 3 侧柏枝枯病菌形态特征 （a）～（b）菌落形态（PDA培养7 d，14 d）;（c）诱导培养基中着生在松针上的分生孢子座；（d）～（e）菌落形态（MEA培养3 d，7 d）；（f）分生孢子
Figure 3. Neofusicoccum occulatum (a)~(b) cultural character (cultured on PDA for 7 d, 14 d), (c) conidiomata formed on pine needles in culture, (d)~(e) cultural character (cultured on MEA for 3 d, 7 d), (f) conidia, Bars=50 μm
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CBL-02、CBL-03、CBCB-02菌株与38株Neofusicoccum spp.参考菌株进行比对，以Botryosphaeria dothidea CBS115476、Dothiorella iberica CBS115041、D. sarmentorum IMI63581B为外围菌株，基于 ITS、TEF1-α、TUB2基因序列数据，运用最大似然法（Maximum Likelihood）构建进化树。CBL-02，CBL-03和CBCB-02菌株与Neofusicoccum occulatum聚在一个进化分枝上，自展支持率为 89%（图4）。结合分离菌株形态特征、培养性状以及多基因系统发育分析，本试验获得的菌株为N. occulatum Sakalidis, M. L., Burgess, T. I.。
图 4 利用最大似然法基于侧柏叶枯病菌ITS、TEF-1α和TUB2的基因数据构建的系统发育树。自展支持率标于节点处，以Botryosphaeria dothidea CBS115476、Dothiorella sarmentorum、D. iberica为外围菌株，标尺指示0.005步变化。
Figure 4. Phylogenetic tree of all isolates tested with allied taxa calculated with sequence data of concatenated ITS, TEF-1α and TUB2 using maximum likelihood method (1,000 bootstrap replicates; bootstrap values indicated at nodes. Botryosphaeria dothidea, Dothiorella sarmentorum and D. iberica represent the out group. The scale bar indicates the number of expected changes per site.
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N. occulatum是Sakalidis 2011年[6]首次在澳大利亚的桉树（Eucalyptus spp.），瓦勒迈杉（Wollemia nobilis W. G. Jones, K. D. Hill & J. M. Allen）上分离获得。已有研究表明，N. occulatum已在非洲（乌干达）、大洋洲（澳大利亚、美国夏威夷）、南美洲（乌拉圭）、亚洲（泰国）等5个国家有分布，可以危害南洋杉（Araucaria cunninghamii Sweet），邓恩桉（Eucalyptus dunnii Maiden），大桉（E. grandis W. Mill ex Maiden），巨桉杂交种（E. grandis hybrid），粗皮桉（E. pellita F. V. Muell.），桉树（Eucalyptus sp.），尾叶桉和赤桉杂交种（Eucalyptus urophylla S. T. Blake x E. camaldulensis Dehnh.），瓦勒迈杉（W. nobilis），银桦（Grevillea sp.），Blepharocalyx salicifolius (Kunth) O. Berg，蓝莓（Vaccinium spp.），葡萄（Vitis vinifera L.），束花石斛（Dendrobium chrysanthum Wall. ex Lindl.）等寄主植物[7-9]。本研究结果表明N. occulatum已在我国有分布，这是国内有关N. occulatum的首次报道。目前，对N. occulatum的研究仅局限分类研究，其生物学、生态学、流行学、种群遗传结构和有效的防治措施尚需进一步系统研究。
据已有的文献报道，新壳梭孢属真菌（Neofusicoccum sp.）可以危害美国扁柏（Chamaecyparis lawsoniana (A. Murray bis) Parlatore）、日本扁柏（Ch. Obtuse (Siebold et Zuccarini) Enelicher）、日本花柏（Ch. pisifera (Siebold et Zuccarini) Enelicher）、柏木（Cupressus funebris Endl.）、地中海柏木（Cu. sempervirens L.）、欧洲刺柏（Juniperus communis L.）、北美香柏（Thuja occidentalis L.）、北美乔柏（T. plicata Donn ex D. Don）、罗汉柏（Thujopsis dolabrata (Thunberg ex L. f.) Sieb. et Zucc.）、巨杉（Sequoiadendron giganteum (Lindl.) J. Buchholz）[10]，尚未见危害侧柏的报道，是侧柏上发生的一种新病害。
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本研究通过组织分离、单孢纯化，致病性测定，表明获得的单孢菌株CBL-02，CBL-03和CBCB-02均可以引起侧柏枝枯病。通过形态学以及多基因系统发育分析，证实分离获得菌株为N. occulatum。
山东省侧柏枝枯病病原菌鉴定及其致病性测定
Identification and Pathogenicity of Neofusicoccum occulatum the Agent Shoot Blight of Platycladus orientalis in Shandong Province, China
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摘要:
目的 明确引起山东省济南市侧柏枝枯病的病原菌种类，为该病的防控提供依据。 方法 采用组织分离法和单孢分离法进行病原分离纯化，通过形态学和多基因系统发育分析 (ITS、TEF-1α、TUB2)相结合的方法对分离菌株进行鉴定，通过人工接种测定其致病性。 结果 菌落初期白色，菌落中间簇状，后期菌落深灰绿色，背面黑褐色。分生孢子单孢透明，梭形、椭圆形、卵球形。根据形态特征和多基因系统发育分析将分离菌株鉴定为Neofusicoccum occulatum Sakalidis, M. L., Burgess, T. I.。人工接种分离菌株，均可以引起侧柏枝条、鳞叶发病，症状与田间一致。从发病部位同样可以分离获得接种菌株。 结论 明确了N. occulatum是引起山东省济南市林场侧柏枝枯病的致病菌。 Abstract:Objective The pathogens causing shoot blight of Platycladus orientalis (L.) Franco in the Jinan Forest Farm, Shandong province were identified to provide a basis for the prevention and control of the disease. Method The pathogens were isolated from the lesion borders of P. orientalis by tissue isolation, and the pure cultures were obtained by monosporic isolation. The isolated strains were identified by combining morphological and polygenic phylogenetic analysis (ITS, TEF-1α, TUB2). Result Colonies were initially white, flattened with tufts of white mycelium. After 14 days, mycelium turned to be dark gray-green and dark brown on the back. Conidia are hyaline, unicellular, fusiform, ellipsoid, and cymbiform, ovoid. Three representative isolates (CBL-02, CLB-03, and CBCB-02) were used for pathogenicity tests and phylogenetic analyses. All the isolates tested could cause similar symptoms on the P. orientalis. The multilocus phylogenetic tree was generated using the maximum parsimony method based on 3 genomic loci ITS, TEF-1α, and TUB2. In the maximum likelihood phylogenetic tree, all test isolates were clustered in N. occulatum clade with 89% bootstrap support. Based on the multi-gene phylogeny and morphology, all test isolates were identified as N. occulatum Sakalidis, M. L., Burgess, T. I. Conclusion It is clear that N. occulatum is the pathogenic bacteria causing shoot blight of P. orientalis, and P. orientalis in Jinan City, Shandong Province. -
图 1 侧柏枝枯病症状（a）~（c）林间症状；（d）在侧柏鳞叶和枝条上产生的子实体；（e）分生孢子器纵切面
Figure 1. Shoot blight disease symptom on Platycladus orientalis; (a)~(c) symptom in the field; (d) fruiting bodies produced on leaves and shoots (e) longitudinal section of pycnidium Bars=20 μm
图 2 致病性试验（a）～（c）侧柏叶片接种CBCB-02菌株7 d后症状及子实体; （d）侧柏枝条接种CBCB-02菌株7d后症状及子实体；（e）2年生侧柏苗接种CBCB-02菌株30 d症状；（f）对照；（g）2年生侧柏苗接种CBCB-02菌株60 d症状；左边为对照，右边为处理。
Figure 2. Pathogenicity test; (a)～(c) symptoms on Platycladus orientalis leaves inoculated with isolate CBCB-02 for 7 d; (d) symptoms on inoculation sites of P. orientalis shoot; (e) symptoms on seedlings (2-years) inoculated with isolate CBCB-02 for 30 d; (f) inoculated with sterile distilled water; (g) symptoms on seedlings (2-years) inoculated with isolate CBCB-02 for 60 d, L: control, R: treated
图 3 侧柏枝枯病菌形态特征 （a）～（b）菌落形态（PDA培养7 d，14 d）;（c）诱导培养基中着生在松针上的分生孢子座；（d）～（e）菌落形态（MEA培养3 d，7 d）；（f）分生孢子
Figure 3. Neofusicoccum occulatum (a)~(b) cultural character (cultured on PDA for 7 d, 14 d), (c) conidiomata formed on pine needles in culture, (d)~(e) cultural character (cultured on MEA for 3 d, 7 d), (f) conidia, Bars=50 μm
图 4 利用最大似然法基于侧柏叶枯病菌ITS、TEF-1α和TUB2的基因数据构建的系统发育树。自展支持率标于节点处，以Botryosphaeria dothidea CBS115476、Dothiorella sarmentorum、D. iberica为外围菌株，标尺指示0.005步变化。
Figure 4. Phylogenetic tree of all isolates tested with allied taxa calculated with sequence data of concatenated ITS, TEF-1α and TUB2 using maximum likelihood method (1,000 bootstrap replicates; bootstrap values indicated at nodes. Botryosphaeria dothidea, Dothiorella sarmentorum and D. iberica represent the out group. The scale bar indicates the number of expected changes per site.
表 1 PCR扩增所用引物及反应程序
Table 1. Primers used in this study, with sequence and PCR conditions
基因
Gene引物
Primer序列
Sequence预变性
Initial denaturation变性
Denaturation退火
Annealing延伸
Extension最后延伸
Final extension°C min °C s °C s °C min °C min ITS ITS1 TCCGTAGGTGAACCTGCGG 95 5 94 30 58 30 72 1.5 72 7 ITS4 TCCTCCGCTTATTGATATGC TEF1-α EF1-728F CATCGAGAAGTTCGAGAAGG 94 5 94 30 52 30 72 1.5 72 7 EF-986R TACTTGAAGGAACCCTTACC TUB2 BT-2a GGTAACCAAATCGGTGCTGCTTTC 94 5 94 45 55 30 72 45 72 10 BT-2b ACCCTCAGTGTAGTGACCCTTGGC 
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表 2 用于系统发育分析的参考菌株序列
Table 2. Strains and sequences of the genus Neofusicoccum used in this study
种类
Species菌株编号
Cultrue accession寄主
Host国家
Country基因编号
GenBank accessionsITS TEF-1α TUB2 Neofusicoccum algeriense CBS137504 Vitis vinifera Algeria KJ657702 KJ657715 KX505915 N. algeriense CAA322 Eucalyptus globulus - KX505906 KX505894 KX505916 N. andinum CBS117453 Eucalyptus sp. Venezyela AY693976 AY693977 KX464923 N. arbuti CBS116131 Arbutus menziesii USA AY819720 KF531792 KF531793 N. australe CMW6837 Acacia sp. Australia AY339262 AY339270 AY339254 N. batangarum CBS124924 Terminalia catappa Africa FJ900607 FJ900653 FJ900634 N. brasiliense CMM1338 Mangifera indica Brazil JX513630 JX513610 KC794031 N. buxi CBS113714 B.sempervirens France KX464164 KX464677 KX464954 N. cordaticola CBS123634 Syzygium cordatum South Africa EU821898 EU821868 EU821838 N. corticosae CBS120081 - - DQ923533 KX464682 KX464958 N. cryptoaustrale CMW23785 Eucalyptus sp. South Africa FJ752742 FJ752713 FJ752756 N. eucalvpticola CBS115766 Eucalyptus rossii Australia AY615143 AY615135 AY615127 N. eucalypticola CBS115679 Eucalyptus rossii Australia AY615141 AY615133 AY615125 N. hellenicum CERC1947 Pistachia vera Greece KP217053 KP217061 KP217069 N. illicii CGMCC3.18311 Illicium verum China KY350150 KY817756 KY350156 N. kwambonambiense CBS123639 Syzygium cordatum South Africa EU821900 EU821870 EU821840 N. lumnitzerae CMW41469 - - KP860881 KP860724 KP860801 N. luteum CBS110299 Vitis vinifera Portugal AY259091 AY573217 DQ458848 N. macroclavatum WAC12444 Eucalyptus globulus Australia DQ093196 DQ093217 DQ093206 N. mangiferae CBS118531 Mangifera indica Australia AY615185 DQ093221 AY615172 N. mangroviorum CMW41365 - - KP860859 KP860702 KP860779 N. mediterraneum CBS121718 Eucalyptus sp. Greece GU251176 GU251308 GU251836 N. occulatum CBS128008 Eucalyptus grandis hybrid Australia EU301030 EU339509 EU339472 MUCC286 Eucalyptus pellita Australia EU736947 EU339511 EU339474 CBL-02* Platycladus orientalis China OM283294 OM315202 OM403995 CBL-03* Platycladus orientalis China OM283295 OM315203 OM691696 CBCB-02* Platycladus orientalis China OM283296 OM315204 OM403996 N. parvum CMW9081 Actinidia deliciosa New Zealand AY236943 AY236888 AY236917 N. parvum CBS110301 Vitis vinifera Portugal AY259098 AY573221 EU673095 N. pennatisporum MUCC510 Vitis vinifera - EF591925 EF591976 EF591959 N. pistaciae CBS595.76 Pistachia vera Greece KX464163 KX464676 KX464953 N. pistaciarum CBS113083 Pistachia vera USA KX464186 KX464712 KX464998 N. protearum CBS114176 - South Africa AF452539 KX464720 KX465006 N. ribis CBS115475 Ribes sp. USA AY236935 AY236877 AY236906 N. sinense CGMCC3.18315 - China KY350148 KY817755 KY350154 N. stellenboschiana CBS282.70 - - KX464225 KX464758 KX465051 N. terminaliae CMW26679 - - GQ471802 GQ471780 KX465052 N. umdonicola CBS123645 Syzygium cordatum South Africa EU821904 EU821874 EU821844 N. ursorum CMW24480 Eucalyptus sp. South Africa FJ752746 FJ752709 KX465056 N.viticlavatum CBS112878 Vitis vinifera South Africa AY343381 AY343342 KX465058 N. vitifusiforme CBS110887 Vitis vinifera South Africa AY343383 AY343343 KX465061 Dothiorella iberica CBS115041 Quercus ilex Spain AY573202 AY573222 EU673096 D. sarmentorum IMI63581b Ulmus sp. United Kingdom AY573212 AY573235 EU673102 Botryosphaeria dothidea CBS115476 Prunus sp. Switzerland AY236949 AY236898 AY236927 *表示的是研究菌株。
*=Strains collected in the present study.
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