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病原菌种内专化型的分化机制是植物病理学研究的基本问题,揭示其中的机制对于认识病害发生规律和提出防治策略均具有重要意义[1]。杨生褐盘二孢(Marssonina brunnea (Ell. et Ev.) P. Magn.)是引起杨树早期落叶和树势衰弱的重要病原菌[2-3],针对不同杨树寄主,该菌分化为多芽管和单芽管两个专化型,并在自然界分别只侵染亲和性黑杨(Aigeiros)(包括青杨Tacamahaca)派系寄主和白杨派系(Leuce)寄主[2, 4]。有研究表明,籍于ITS分子系统发育以及其它遗传分子标记,在一定程度上可区分两个专化型[5-6],尤其ITS2遗传特征能区分聚类不清的专化型[6],这说明两个专化型的分化具有一定的分子遗传基础。但这种分化基础在病原与寄主互作水平上的表现并未给予揭示,专化型是病原侵入寄主过程中与寄主互作的表型体现,是病原与寄主互作生态进化的结果,其中寄主的病程相关蛋白可能参与或奠定了专化性的发生基础[1]。为此,作者在明确黑杨寄主对两个专化型侵染具有响应的基础上,通过分析已有相关病原专化型侵染与杨树互作过程的研究报道,选取了具有抗病标记作用的杨树寄主基因,如水杨酸(SA)诱导表达防卫基因PR5(类奇异果糖蛋白)、抗性基因PR10、SAR(systemic acquired resistance)信号途径中起关键调控因子的非病程相关基因表达基因NPR1(Nonexpressor of Pathogenesis-related Genes1)、抗病调控转录因子WRKY以及和对褐斑病病菌菌丝有抑制作用的无色花色素还原酶基因(PtrLAR)等进行分析研究,结果初步证明了杨生褐盘二孢和寄主的互作是形成杨树专化型的基础之一。
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杨生褐盘二孢多芽管专化型菌株RHHB分离自河北任丘黑杨(Populus deltoids),单芽管专化型菌株RHBH分离自北京昌平白杨(P. tomentosa)。菌株保藏于中国林业科学研究院森林生态环境与保护研究所病理室。
供试黑杨为一年生扦插苗盆栽苗。扦插于第二年3月份,7—8月份成熟叶片用于接种试验。
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孢子悬浮液制备:两专化型菌株RHHB和RHBH分别在PDA培养基上培养30 d,无菌水洗脱孢子,分别制备成浓度为106个·mL-1的孢子悬浮液用于接种。
侵染试验及病情分级:7—8月份,选取健康长势相近的一年生的黑杨扦插植株进行处理试验。每株选取7~8片健康成熟叶片用于涂抹接种,塑料袋保湿48 h。对照设置为接种无菌水。选取接种后2、8、24、96 h观察记录侵染过程和发病情况,该时间点对应孢子萌发的不同发育阶段和侵染阶段。发病程度依据病情指数统计,病情指数分级标准见表 1。
病级
Disease stage病斑数·cm-2叶面
Spots no./cm2 in leaf抗病程度
Disease condition level0 0 免疫 1 0.1-10 高抗 2 10.1-24.0 中抗 3 >24,病斑离散 中感 4 >24,病斑联合 高感 Table 1. Disease classification standard of poplar leaves inoculate in vitro
侵染过程观察:黑杨接种叶组织经徒手切片[7]后,放在载玻片上,滴加0.001%的荧光增白剂(18909-100ML-F, Sigma),黑暗条件下染色5 min后,在倒置荧光显微镜(徕卡DMI6000B)观察褐盘二孢孢子在黑杨叶片的发育侵染过程。
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取接种后第2、24、96 h处理组黑杨和对照叶组织,用锡箔纸包裹立即放到液氮中1 min,然后取出放入-80℃冰箱中保藏至RNA提取。
RNA提取及反转录:实验采用CTAB法提取RNA[8]。用1%琼脂糖凝胶及Nanodrop ND-1000仪对RNA完整性和质量进行检测。反转录前,用RQ1 RNase-Free Dnase (Promega)去除RNA样本中的DNA,并将RNA的浓度稀释为100 ng·μl-1,取10 μlRNA作为反转录起始模板,反转录试剂盒采用Revert Aid First Strand cDNA Synthesis Kit (Thermo),按说明书进行。
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以病程相关蛋白PR5、PR1、NPR1,WRKY基因家族的基因PtrWRKY89以及无色花色素还原酶基因PtrLAR3为定量表达基因,内参基因为ACTIN。内参基因与目的基因扩增效率M值< 0.1。上述基因扩增引物(表 2)见相关文献[9-12],且其专化性经过实验验证。
基因Gene 蛋白ID Protein ID 5’-引物5’-primer 3’-引物3’-primer 产物大小(bp)Product size PR-5 669475 CGAAACCAATGCCCTTACAC CAATCACCTGTCTCGCACAT 139 PR-10 827390 GTTTGGATGGAGGGAGTTGA CAGTCCTTCGGTCTTCTTGC 122 NPR1 253241 GACGAGGAAGACAAACCAGTGCG CGACGATACTTCCCCAGTTGCTC 154 PtrWRKY89 7484630 TCCAACGATCCACAATAACC TAAAACATCACCGCCGTCTC 157 PtrLAR3 CGGTGATGGGACAGTTAAAG CATGGCAACAAAGCTCTCAA 140 Actin EF418792.1 TCATCGGAATGGAAGCTGCTGGTA TAGTGGAACCACCACTGAGCACAA 117 Table 2. The Primers of target genes in Real-time PCR
基因表达定量采用SYBR Green (Life Technologies)相对定量2-ΔΔCt法。其中ΔΔCt的计算方法如下:
ΔCt=Ct(目的基因)— Ct(参考基因)
△△Ct =△Ct(试验样品)—△Ct(基准样品)
△Ct(试验样品) = Ct(试验样品,目的基因)—Ct(试验样品,内参基因)
△Ct(基准样品) = Ct(基准样品,目的基因)—Ct(基准样品,内参基因)
定量PCR的反应体系为20 μL,每个处理3个重复。反应程序:95℃预变性10 min;95℃变性10 s,60℃退火60 s(开启荧光),40个循环。定量PCR仪为Rorot Gene 6000。
1.1. 杨生褐盘二孢和供试黑杨材料
1.2. 专化型菌株侵染黑杨试验及过程观察
1.3. 荧光定量PCR分析黑杨响应不同专化型菌株侵染的相关基因表达
1.4. Real-time PCR
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经接种试验调查,两专化型在供试黑杨上产生的发病率情况分别是:多芽管专化型菌株RHHB从29.2~50%;单芽管专化型菌株RHBH从08.3%,分别表现为感病和抗病(表 3)。这与自然界专化型侵染相应寄主发病的现象是一致的。
菌株
Strain黑杨 批次
Batch数量
No.病情指数
Disease index病情
Disease conditionRHHB 2~5 6 29.2~50 中感 RHBH 2~2 6 0~8.3 高抗 注:叶片的感病程度以病情指数作为衡量标准,抗病程度与感病指数之间的对应关系是:免疫,0;高抗0.1~10;中抗10.1~24.0;中感24.1~50.0;高感50.1~100。 Table 3. Results of disease condition of P. nigra leaves inoculate M. brunnea
杨生褐盘二孢黑杨专化型RHHB和白杨专化型RHBH在黑杨叶片上的发育过程(图 1、2)基本一致,即在接种2 h时,分生孢子开始萌发,在2~12 h逐渐长出芽管;12 h时始见附着孢;在24 h时产生大量附着孢;48~96 h时产生先菌丝。
RHHB在黑杨叶片表面开始大量形成先菌丝,先菌丝先端接触到叶片后膨大形成附着孢,由此开始侵染叶片。菌丝在扩展过程中逐渐形成分生孢子盘,接种叶片在10 d可以看到产生病斑,病斑颜色由褐色逐渐加深至黑色;而RHBH产生少量先菌丝后就不再对叶片侵染,接种10 d后也未发现叶片表面有病斑出现。
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选择内参基因Actin和五个目的基因的标准曲线的相关系数R2>0.97,扩增效率E值为1.05和1.06,两者的M值相差小于0.1 (表 4)。扩增后的产物可通过溶解曲线的峰型图直观判断,内参Actin和五个目的基因的Real-time PCR产物经过电泳均为单一条带(图 3),表明扩增产物特异性较高。这些结果均符合实时荧光定量PCR标准曲线相关标准,满足后续试验要求,可以进行荧光定量PCR试验[13-14]。
基因Gene R2值R2-value M值M-value E值E-value Actin 0.993 76 -3.208 1.05 PR5 0.986 63 -3.218 1.05 PR10 0.974 96 -3.178 1.06 NPR1 0.995 81 -3.177 1.06 PtrWRKY89 0.981 58 -3.208 1.05 PtrLAR3 0.991 92 -3.212 1.05 Table 4. Relative quantitative parameters
黑杨5个抗性基因在叶片分别接种孢子2 h、24 h、96 h后的表达情况如下(图 4)。
在黑杨应答杨盘二孢侵染的过程中,随着孢子在叶片上的萌发生长和侵染,抗病基因对不同专化型的表达也呈现不同的变化。多芽管专化型(黑杨专化型)病菌侵入时,黑杨在接种2 h时孢子萌发时,均上调表达了5个抗性基因,其中PR10上调最为显著;至接种后24 h时病菌附着孢形成,寄主中这5个基因均呈现显著下调表达,显示出寄主对这一时期病菌侵染过程抗性的减弱;而接种96 h时,病菌先菌丝形成并侵入后,仅有PtrWRKY89和PtrLAR3显著上调表达,其余3个基因的表达与孢子萌发期的表达水平几乎持平。
而黑杨对单芽管专化型(白杨专化型)病菌相同发育阶段和侵染过程的应答,则是接种2 h时,PR10和PtrWRKY89显著上调表达,而其余3个基因的表达微式上调;接种24 h时病菌形成附着孢,PR5、NPR1和PtrLAR3持续明显上调,至接种96 h时,这3个参与病菌先菌丝形成和侵入阶段的抗性基因表达达到检测时间内的最高表达量;而PR10在接种24 h和96 h时持续下调,PtrWRKY89则在接种24 h时有所下调后,接种96 h时又有上调至病原菌侵染之处2 h的表达水平。因此,黑杨中5个抗性基因对两专化型的表达谱没有一个是相似的。可见,两专化型在侵染时,与寄主的互作在分子水平上存在显著差异。